septiembre 18, 2021
Auxina a masiva indicaciones

Auxina a masiva indicaciones

La auxina en las raíces

La mayoría de los herbicidas con auxinas son ácidos orgánicos con un anillo aromático y un grupo carboxilo, y tienen un bajo peso molecular, similar al de la auxina natural ácido indol-3-acético (IAA) (George, 1963). Los ácidos fenoxi-carboxílicos (p. ej, ácido 2,4-diclorofenoxiacético); ácidos benzoicos (por ejemplo, dicamba); ácidos piridínicos (por ejemplo, picloram, clopiralid); ácidos quinolinecarboxílicos (por ejemplo, quinclorac); y ácidos pirimidínicos carboxílicos (por ejemplo, quinclorac) (por ejemplo, aminociclopiraclor). La variación estructural de cada molécula de herbicida afecta a su unión a las proteínas receptoras y a la tasa de degradación dentro de la célula (Tan et al., 2007).
Se pensaba que la resistencia a la auxina era difícil de evolucionar por varias razones, entre ellas I mutaciones genéticas en las vías de señalización de la auxina, que alterarían la compleja red de señalización gobernada por la auxina y, por tanto, reducirían la capacidad de supervivencia en condiciones ambientales duras (Jasieniuk y Maxwell, 1994; Mortensen et al., 2012)

La auxina natural

La síntesis y distribución de la fitohormona auxina son cruciales para el crecimiento y la morfología de las plantas vasculares. Se utiliza un sistema de transportadores de afluencia y efluencia de auxina para llevarla de una célula a otra. Las proteínas PIN-FORMED (PIN) se han propuesto como transportadores de eflujo de auxina, y los flujos de auxina pueden predecirse basándose en la distribución de PIN en la membrana plasmática, que es asimétrica en muchas células. Las quinasas AGCVIII de Arabidopsis D6 PROTEIN KINASE (D6PK) y PINOID (PID)/WAG permiten directamente el transporte de auxina mediado por PIN en un sistema heterólogo de oocitos de Xenopus, así como en tallos de inflorescencia de Arabidopsis thaliana. Simultáneamente, descubrimos que las D6PKs y las PID tienen distintas preferencias de fosfitos. Nuestros hallazgos indican que la activación del PIN mediada por la proteína quinasa es un componente importante de la regulación del transporte de auxina que debe ser considerado cuando se estudia la distribución de auxina en las plantas.
Una hormona llamada auxina regula el desarrollo de tallos y raíces en las plantas. Esta sustancia química se transporta de célula a célula, y su flujo a través de la planta se desvía constantemente a medida que ésta crece. La auxina es bombeada fuera de las células por unas proteínas llamadas transportadores de eflujo de auxina, que se encuentran en la membrana celular. El transporte de auxina es guiado por estas proteínas, que suelen estar situadas en un lado de cada célula.

Auxina pdf

Las plantas pueden interactuar con una gran variedad de microorganismos, dando lugar a interacciones neutras, amistosas u hostiles. La capacidad de las plantas para distinguir entre microorganismos compatibles e incompatibles, así como para restringir o favorecer su colonización, es fundamental para su supervivencia. El grado de interacción entre la planta huésped y el microorganismo invasor está determinado por complejas redes de comunicación. Las fitohormonas regulan las interacciones planta-microbio modulando las conexiones planta-microorganismo y coordinando las respuestas celulares y metabólicas a la progresión del microorganismo a través de varios tejidos de la planta. Se estudia el control hormonal de las raíces de las plantas y los microorganismos del suelo, haciendo hincapié en las fitohormonas auxina y citoquinina, así como en las asociaciones bacterianas y fúngicas, que pueden ser beneficiosas (simbióticas) o perjudiciales (parasimbióticas) (patógenas). El objetivo es llamar la atención sobre las similitudes y diferencias en las funciones de la citoquinina/auxina entre las diferentes asociaciones compatibles e incompatibles.

La auxina se descubrió por primera vez en qué planta

El GC se equipó con una entrada capilar dividida/sin dividir, y el septo estándar se sustituyó por un adaptador que permitía utilizar el sello de alta presión Merlin MicrosealTM . El sello original de vespel/grafito del kit adaptador de Thermo Scientific se sustituyó por una arandela de teflón hecha a medida, que se colocó bajo el adaptador hexagonal, para proporcionar un sello más fuerte de la entrada y evitar la adsorción de compuestos indólicos. En el inyector del automuestreador, se colocó una jeringa de 10 l con una aguja de 80 mm, y se cambió la posición del inyector para ajustarse a la posición y altura de la válvula Merlin MicrosealTM. Una camisa de cuarzo hecha a medida con un racimo de lana de cuarzo insertado en el centro sustituyó a la camisa de entrada recta original (Restek, nº de cat. 20939). En el MS se instaló una fuente de impacto de electrones (EI) con una emisión de electrones de 70 eV. Programa de GC-MS/MS
Figura 3: Derivados del analito antes del examen por GC-MS. (A) En primer lugar, el NaB2H4 reduce el IPA para producir 2 H1ILA (pasos 5-6). A continuación, se utiliza el diazometano para metilar el 2 H1ILA, dando lugar al metil-2 H1ILA (paso 20). El diazometano metila el IAA y el IBA, dando como resultado metil-IAA y metil-IBA (Paso 50). (D) El cloroformato de metilo (MCF) se utiliza para derivar el Trp en presencia de metanol y piridina (Pasos 60-61). Los átomos de carbono del MCF y del metanol también se mezclan en el producto final. El flujo de estos carbonos se indica con las etiquetas “*” y “#” [30]. Imagen en su totalidad

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